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禽流感病毒H5/H7/H9型(H5/H7/H9)三重核酸檢測試劑盒 (熒光RT-PCR法)
更新時間:2024-08-16 點擊量:250

流感病毒H5/H7/H9型H5/H7/H9三重核酸檢測試劑盒

(熒光RT-PCR法)

 

【產品名稱】

通用名稱:流感病毒H5/H7/H9H5/H7/H9)三重核酸檢測試劑盒(熒光RT-PCR法)

 

【包裝規(guī)格】50T/盒

 

【預期用途】

禽流感病毒(AIV)屬甲型流感病毒。流感病毒屬于RNA病毒的正黏病毒科,分甲、乙、丙3個型。其中甲型流感病毒多發(fā)于禽類,一些甲型也可感染豬、馬、海豹和鯨等各種哺乳動物及人類;乙型和丙型流感病毒則分別見于海豹和豬的感染。甲型流感病毒是依據病毒表面的血細胞凝集素H)和神經氨酸酶N)來命名,其中H有16個亞型,N有9個亞型。本試劑盒適用于檢測標本中的流感病毒H5、H7和H9亞型病毒RNA,適用于流感病毒H5、H7和H9亞型感染的輔助診斷及流行病學調查。

 

【檢驗原理】

本試劑盒用流感病毒H5、H7和H9亞型的特異性基因分別設計2特異性引物,分別結合1條特異性熒光探針,用一步法熒光RT-PCR技術對流感病毒H5、H7和H9亞型的RNA進行體外擴增檢測,用于臨床上對可疑感染者的病原學診斷。

 

【試劑組成】

     

規(guī)      

H5/H7/H9酶液

50μL×1管

H5/H7/H9反應液

950ul×1管

H5/H7/H9陽性質控品

50μL ×1管

陰性質控品

50μL ×1管

說明:不同批號的試劑盒組分不可交互使用。

【儲存條件及有效期】

-20℃±5℃,避光保存、運輸、反復凍融不超過5次,有效期12個月。

 

適用儀器

ABI 7300、7500、ABI stepone / stepone plus、安捷倫MX3000P/3005P、MJ Opticon2、Eppendorf 2/4 Color Systems、Bio-RadCFX96 等熒光定量PCR檢測儀。

 

【標本采集】

病死或撲殺禽,取喉氣管、腦、胸肌、心肌和肺等組織;待檢活禽,采集1ml血液樣本置于1.5ml滅菌離心管中,或用棉拭子取呼吸道分泌物或排泄物,置于1mL 50%甘油生理鹽水中。

 

【保存和運輸】

上述標本短期內可保存于-20℃,長期保存可置-70℃,但不能超過6個月,標本運送應采用2~8℃冰袋運輸,嚴禁反復凍融。

 

使用方法

1. 樣品處理(樣本處理區(qū))

1.1 樣本前處理

每份組織分別從3個不同的位置稱取樣品約1g,手術剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨,加入1.5mL生理鹽水后繼續(xù)研磨,待勻漿后轉至1.5mL滅菌離心管中,8000rpm離心2min,取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中;棉拭子直接取100μL于1.5mL滅菌離心管中;血液待血凝后取血清100μL于1.5mL滅菌離心管中。

 

1.2 RNA提取

為了使實驗結果穩(wěn)定、有效、可靠,建議使用商品化的RNA 提取試劑盒進行提取,嚴格按照對應試劑盒說明書進行操作。

 

2. 試劑配制(試劑準備區(qū))

 

根據待檢測樣本總數,設所需要的PCR反應管管數為N(N=樣本數+1管陰性對照+1管陽性對照;樣品每滿7份,多配制1份),每測試反應體系配制如下表:

試劑

H5/H7/H9反應液

酶液

用量

19μL

1μL

 

3. 加樣(樣本處理區(qū))

將步驟1提取的RNA、陽性質控品、陰性質控品各取5μL,分別加入相應的反應管中,蓋好管蓋,混勻,短暫離心。

 

4. PCR擴增(核酸擴增區(qū))

4.1 將待檢測反應管置于熒光定量PCR儀反應槽內;

4.2 設置好通道、樣品信息,反應體系設置為25μL;

熒光通道選擇: 檢測通道(Reporter Dye)FAM檢測禽流感病毒H5亞型HEX/VIC檢測禽流感病毒H7亞型,CY5通道檢測禽流感病毒H9亞型,淬滅通道(Quencher Dye)選擇NONE,請勿選擇ROX參比熒光。

4.3 推薦循環(huán)參數設置:

步驟

循環(huán)數

溫度

時間

收集熒光信號

1

1cycle

50

15min

2

1 cycle

95℃

3min

3

45cycle

95

15sec

55℃

30sec

 

5. 結果分析判定

5.1 結果分析條件設定

設置Baseline和Threshold:一般直接按機器自動分析的結果分析,當曲線出現整體傾斜時,根據分析后圖像調節(jié)Baseline的start值(一般可在3~15范圍內調節(jié))、stop值(一般可在5~20范圍內調節(jié)),以及Threshold的Value值(上下拖動閾值線至高于陰性對照),重新分析結果。

 

5.2 結果判斷

陽性:檢測通道Ct值≤38.0,且曲線有明顯的指數增長曲線。

可疑檢測通道38.0<Ct值<40.0,且出現典型擴增曲線的樣本建議重復試驗,重復試驗結果出現Ct值<40.0且有典型擴增曲線者為陽性,否則為陰性。

陰性:樣本檢測結果無Ct值且無明顯的擴增曲線。

 

6. 檢測方法的局限性

樣本檢測結果與樣本收集、處理、運送以及保存質量有關;

樣本提取過程中沒有控制好交叉污染,會出現假陽性結果;

陽性對照、擴增產物泄漏,會導致假陽性結果;

病原體在流行過程中基因突變、重組,會導致假陰性結果;

不同的提取方法存在提取效率差異,會導致假陰性結果;

試劑運輸,保存不當或試劑配制不準確引起的試劑檢測效能下降,出現假陰性或定量檢測不準確的結果;

本檢測結果僅供參考,如須確診請結合臨床癥狀以及其他檢測手段。

 

7. 質控標準

陰性質控品:無明顯擴增曲線且無Ct值顯示;

陽性質控品:擴增曲線有明顯指數生長期,且Ct值≤30

以上條件應同時滿足,否則實驗視為無效。

 

8. 性能指標

1)敏感性:內控樣本敏感性為100%,綜合評價敏感性98%以上。最低檢測限不低于1000copies/ml。

2)特異性:100%。

3)穩(wěn)定性:批內及批間差異≤3%。

 

注意事項

所有操作嚴格按照說明書進行;

試劑盒內各種組分使用前應自然融化,完全混勻并短暫離心;

反應液應避光保存;

反應中盡量避免氣泡存在,管蓋需蓋緊;

使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服;

樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進行,以免交叉污染;

實驗完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺和移液器;

試劑盒里所有物品應視為污染物對待,并按照《微生物生物醫(yī)學實驗室生物安全通則》進行處理。

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實驗技術服務:


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